88BIFA

猪瘟疫苗免疫到底免疫几头份？很多猪场技术人员都提出了这样的疑问。回答这个疑问需要解决两个问题。

笔者2011年在上海某集团诊断中心工作时做过某疫苗企业猪瘟疫苗商品猪及母猪不同剂量免疫的试验。那时猪群猪瘟抗体水平较差，试验结果以至于在好几年的时间里不知道如何给猪场推荐猪瘟疫苗免疫剂量，只好推荐他们自己做猪瘟疫苗剂量试验，结果是令人啼笑皆非的：

“同批次的猪瘟苗按照试验结果好的剂量用下去很OK，但同厂家换了批次同剂量又不OK了！”

“我该怀疑疫苗企业了，抓紧换吧！”

“Oh，MyGod!上帝眷顾，换了另一家的同剂量效果棒棒哒，这是个有良心的企业。”

“这批疫苗用完……”（无语）

那么防控猪瘟究竟要免疫几头份才合适？回答这个问题需要解决以下两个问题。

1.猪瘟疫苗的抗原含量及批次间差异

这个问题我引用南京农业大学杜念兴教授1998年发表在《中国畜禽传染病》杂志上名为《猪瘟的回顾与展望》这篇文章中的一段原话来回答：猪瘟兔化弱毒几十年来一直采用兔体反应（RID）测毒。按规程只用一个稀释度，2只兔子，其实一个稀释度不可能测出毒价，只分一次通过、重检通过和不通过三个档次。我们曾建立微量细胞培养ELISA，用以检测C系猪瘟兔化弱毒，效果很好。对不同档次的细胞毒进行检测（结果见图1）。可见合格的细胞毒（包括一次通过和二次通过）中，毒价最高和最低的间差距高达1000倍。

图1.用微量细胞培养ELISA测定兔化毒TCID50与兔体测毒比较

从杜念兴教授的这个试验结果可看出兔体反应（RID）不能反映正确的毒价，同时兔子个体反应性的差异也会影响检测结果，主要是兔体反应（RID）这种检测方法导致流向市场的猪瘟疫苗存在较大的批次间差异；用细胞培养测猪瘟疫苗TCID50更能科学准确的测定毒价。成都88BIFA对市场上的猪瘟疫苗用TCID50检测方法和兔体反应（RID）进行了对比，进一步验证了杜念兴教授的试验结果（见图2）。

图2.市售猪瘟疫苗TCID50与兔体反应RID两种检测方法的比较

如果采用TCID50检测方法作为企业的内控标准，在满足国标的情况下，再按活病毒抗原含量配苗，无疑可以更准确地控制疫苗批次间的差异，同时确保抗原含量一致，也才能清楚应该免疫多少头份，我国台湾及韩国要求每头份猪瘟疫苗≥103.5TCID50。

2.解决运输贮存时温度对猪瘟疫苗的影响，确保使用时的疫苗与出厂时的疫苗一致。

猪瘟病毒的活性与储存温度呈负相关，平均半衰期分别为5℃  2—4天，30℃  1—3h(源于《猪病学第十版》)，可见猪瘟病毒对温度极其敏感。若猪瘟疫苗没有使用耐热保护剂，在－15℃冷冻保存的疫苗，即使在满足冷藏条件2-8℃运输，疫苗抗原含量也会下降，严重时有疫苗在免疫时的活病毒抗原已所剩寥寥无几或不复存在。

2015年浙江大学农业部动物病毒学重点实验室对7个不同厂家的猪瘟疫苗的病毒含量和耐热性能进行了对比（见图3）：D和G直接就检测不到活病毒；C和F在37℃处理24小时后活病毒消失了。如果受到影响的抗原含量的疫苗拿去给猪免疫，即使免疫增加头份也是不能保证有免疫效果的。

图3.猪瘟疫苗的病毒含量和耐热性能对比试验结果

成都88BIFA因在耐热保护方面的突破，可以让其猪瘟疫苗——稳常佳能在2—8℃保存长达24个月，使温度对疫苗的影响降到了最低，确保使用时的疫苗与出厂时的疫苗是一致的。

根据试验数据，可以得出结论：猪瘟疫苗免疫1头份就行了。当然前提条件是，

首先猪瘟疫苗要用TCID50的方法检测病毒含量，中国台湾和韩国要求TCID50≧103.5/头份，成都88BIFA品控标准TCID50≧104.0/头份；

第二是，猪瘟疫苗要添加耐热保护剂，解决猪瘟病毒的热敏感问题，使疫苗抗原不受到影响，保证免疫时疫苗的抗原含量与出厂时是一致的。

第三是在合适的免疫时机免疫，如确保母源抗体对仔猪首免干扰最小。

       （成都88BIFA 张坤）